SARS-подобный кластер циркулирующих коронавирусов летучих мышей показывает потенциал для появления у человека

30 марта 2020 года примечание редакции, март 2020 года: мы знаем, что эта статья используется в качестве основы для непроверенных теорий о том, что новый коронавирус, вызывающий COVID-19, был спроектирован. Нет никаких доказательств того, что это правда; ученые считают, что животное является наиболее вероятным источником коронавируса.

Авторская поправка к этой статье была опубликована 22 мая 2020 года

Исправление к этой статье было опубликовано 06 апреля 2016 года

Эта статья была обновлена

Резюме

Появление коронавируса тяжелого острого респираторного синдрома (торс-ков) и ближневосточного респираторного синдрома (БВРС)-КоВ подчеркивает угрозу межвидовой передачи событий, приводящих к вспышкам среди людей. Здесь мы исследуем потенциал заболевания вирусом, подобным SARS, SHC014-CoV, который в настоящее время циркулирует в популяциях китайских подковообразных летучихмышей 1. Использование системы обратной генетики SARS-CoV2, мы создали и охарактеризовали химерный вирус, экспрессирующий Спайк коронавируса летучих мышей SHC014 в адаптированном к мышам остове SARS-CoV. Полученные результаты свидетельствуют о том, что вирусы группы 2b, кодирующие Спайк SHC014 в костяке дикого типа, могут эффективно использовать множественные ортологи рецептора SARS человеческого ангиотензинпревращающего фермента II (ACE2), эффективно реплицироваться в первичных клетках дыхательных путей человека и достигать титров in vitro, эквивалентных эпидемическим штаммам SARS-CoV. Кроме того, in vivo эксперименты демонстрируют репликацию химерного вируса в легких мышей с заметным патогенезом. Оценка имеющихся иммунотерапевтических и профилактических методов на основе атипичной пневмонии выявила низкую эффективность; как моноклональные антитела, так и вакцинные подходы не смогли нейтрализовать и защитить от инфекции ков с использованием нового спайкового белка. На основе этих результатов мы синтетически воссоздали инфекционный полноразмерный рекомбинантный вирус SHC014 и продемонстрировали надежную вирусную репликацию как in vitro, так и in vivo Наша работа предполагает потенциальный риск повторного появления SARS-CoV из-за вирусов, циркулирующих в настоящее время в популяциях летучих мышей .

Главная

Появление торс-ков ознаменовало новую эру в межвидовой передаче тяжелых респираторных заболеваний с глобализацией, ведущей к быстрому распространению по всему миру и массовым экономическим последствиям3,4. С тех пор в популяциях животных появилось несколько штаммов, включая штаммы гриппа А H5N1, H1N1 и H7N9, а также БВРС—КоВ, что привело к значительным заболеваниям, смертности и экономическим трудностям в пострадавших регионах5. Хотя меры общественного здравоохранения смогли остановить вспышку торс-ков4 недавние метагеномические исследования выявили последовательности близкородственных SARS-подобных вирусов, циркулирующих в популяциях китайских летучих мышей , которые могут представлять будущую угрозу1,6. Однако только данные о последовательностях дают минимальную информацию для идентификации и подготовки к будущим препандемным вирусам. Поэтому, чтобы изучить потенциал возникновения (то есть потенциал заражения людей) циркулирующих ков летучих мышей, мы построили химерный вирус, кодирующий новый зоонозный спайковый белок ков—из последовательности RsSHC014-CoV, которая была выделена из китайских подковообразных летучихмышей 1—в контексте атипичной пневмонии-адаптированный костяк мыши. Гибридный вирус позволил нам оценить способность нового спайкового белка вызывать заболевание независимо от других необходимых адаптивных мутаций в его естественном костяке. Используя этот подход, мы охарактеризовали ков-инфекцию , опосредованную спайковым белком SHC014 в первичных клетках дыхательных путей человека и in vivo, а также проверили эффективность доступных иммунотерапевтических средств против SHC014-ков. Вместе стратегия переводит данные метагеномики, чтобы помочь предсказать и подготовиться к будущим возникающим вирусам.

Последовательности SHC014 и связанного с RsWIV1-ков показывают, что эти CoVs являются ближайшими родственниками эпидемии торс-ков штаммов (фиг. 1А,B); однако существуют важные различия в 14 остатках, которые связывают человеческий ACE2 и, рецептор для SARS-коронавирус, включая пять, которые являются критическими для размещения ряд: Y442, L472, N479, T487 и Y491 (арт. 7). В WIV1 три из этих остатков отличаются от эпидемического штамма SARS-CoV Urbani, но не ожидалось, что они изменят связывание с ACE2 (дополнительный рис. 1a,b и дополнительная таблица 1Этот факт подтверждается как экспериментами по псевдотипированию, которые измеряли способность лентивирусов, кодирующих СПАЙКОВЫЕ белки WIV1, проникать в клетки, экспрессирующие человеческий ACE2 (дополнительный Рис. 1), так и анализами репликации in vitro WIV1-CoV (см. рис. 1 ). Напротив, 7 из 14 остатков ACE2-взаимодействия в SHC014 отличаются от таковых в SARS-CoV, включая все пять остатков, критичных для диапазона хозяина (дополнительный рис. 1c и дополнительная таблица 1). Эти изменения вкупе с неспособностью псевдотипированных лентивирусов, экспрессирующих Спайк SHC014, проникать в клетки (дополнительный рис. 1d), предположил, что шип SHC014 не способен связывать человеческий ACE2. Однако сообщалось, что аналогичные изменения в родственных штаммах SARS-CoV позволяют связывать ACE27,8, что свидетельствует о необходимости дополнительного функционального тестирования для верификации. Поэтому мы синтезировали Спайк SHC014 в контексте репликационно-компетентного, адаптированного к мышам остова SARS-CoV (далее мы будем называть химерный CoV SHC014-MA15), чтобы максимизировать возможности для изучения патогенеза и вакцинации у мышей (дополнительный рис. 2аНесмотря на предсказания как структурного моделирования, так и экспериментов по псевдотипированию, SHC014-MA15 был жизнеспособен и реплицировался до высоких титров в клетках Vero (дополнительный рис. 2b). Подобно SARS, SHC014-MA15 также требовал функциональной молекулы ACE2 для входа и мог использовать ортологи ACE2 человека, циветты и летучей мыши (дополнительный рис. 2c,d). Чтобы проверить способность шипа SHC014 опосредовать инфекцию дыхательных путей человека, мы исследовали чувствительность эпителиальной линии клеток дыхательных путей человека Calu-3 2B4 (ref. 9) к инфекции и обнаружена устойчивая репликация SHC014-MA15, сравнимая с таковой у SARS-CoV Urbani (рис. 1С). Чтобы расширить эти данные, первичные культуры эпителия дыхательных путей человека (HAE) были инфицированы и показали надежную репликацию обоих вирусов (рис. 1d). Вместе эти данные подтверждают способность вирусов с шипом SHC014 заражать клетки дыхательных путей человека и подчеркивают потенциальную угрозу межвидовой передачи SHC014-CoV.

Рис. 1: вирусы, подобные SARS, реплицируются в клетках дыхательных путей человека и вызывают патогенез in vivo.
Рисунок 1

(а) Полноразмерные последовательности генома репрезентативных ков были выровнены и филогенетически картированы, как описано в онлайн-методах. Шкала представляет собой нуклеотидные замены, причем маркируется только бутстрап-поддержка выше 70%. Дерево показывает ков, разделенные на три различные филогенетические группы, определяемые как ?-ков, ?-ков и ?-ков. Классические кластеры подгрупп помечены как 2a, 2b, 2c и 2d для ?-ков и как 1a и 1b для ?-ков. (b) Аминокислотные последовательности доменов S1 спайков репрезентативных ?-ков группы 2b, включая SARS-ков, были выровнены и филогенетически картированы. Шкала представляет собой аминокислотные замены. (c,d) Вирусная репликация SARS-CoV Urbani (черный) и SHC014-MA15 (зеленый) после инфицирования клеток Calu-3 2B4 (c) или хорошо дифференцированных, первичных воздушно-жидкостных интерфейсных культур клеток HAE (d) при кратности инфицирования (MOI) 0,01 для обоих типов клеток. Образцы были собраны в отдельные моменты времени с биологическими копиями (n = 3) как для экспериментов Calu-3, так и для экспериментов HAE. (e,f) Потеря веса (н = 9 для SARS-коронавирус МА15; н = 16 для SHC014-МА15) (е) и вирусной репликации в легких (П = 3 для SARS-коронавирус МА15; П = 4 для SHC014-МА15) (Ф) в 10-недельных мышей линии balb/с, инфицированных 1 ? 104 С. Ф.ЕД. мыши-приспособились торс-ков МА15 (черный) или SHC014-МА15 (зеленый) через интраназальный (я.Н.) маршрут. (g,h) Показаны репрезентативные изображения срезов легких, окрашенных на антиген SARS-CoV N от мышей, инфицированных SARS-CoV MA15 (n = 3 мыши) (g) или SHC014-MA15 (n = 4 мыши) (h). Для каждого графика центральное значение представляет среднее значение группы, а полосы ошибок определяют шкалу s. e.m., 1 мм.

Чтобы оценить роль Спайка SHC014 в опосредовании инфекции in vivo, мы заразили 10-недельных мышей BALB/c 104 бляшкообразующими единицами (p.f.u.) либо SARS-MA15, либо SHC014-MA15 (рис. 1e–h). Животные, инфицированные SARS-MA15, испытывали быструю потерю веса и летальность через 4 дня после заражения (d.p.i.); напротив, инфекция SHC014-MA15 приводила к существенной потере веса (10%), но не приводила к летальности у мышей (рис. 1е). Исследование вирусной репликации выявило почти эквивалентные вирусные титры из легких мышей, инфицированных SARS-MA15 или SHC014-MA15 (рис. 1f). В то время как легкие от ОРВИ-МА15–инфицированных мышах показали, надежное окрашивание как в терминальных бронхиол и паренхимы легких 2 д. стр. я. (Фиг. 1г), те SHC014-МА15–инфицированных мышах показали, восстанавливают проходимость дыхательных путей антигена окрашивания (фиг. 1Н); напротив, нет дефицита в антиген окрашивание наблюдалось в паренхиме или в общей гистологической оценки, предполагая, дифференциальной инфекции легочной ткани для SHC014-МА15 (дополнительная таблица 2). Затем мы проанализировали инфекцию у более восприимчивых, старых (12-месячных) животных. Зараженные SARS-MA15 животные быстро теряли вес и поддавались инфекции (Дополнительный рис. 3а,б). Инфекция SHC014-MA15 индуцировала сильную и устойчивую потерю веса, но имела минимальную летальность. Тенденции в гистологии и паттернах окрашивания антигенами, которые мы наблюдали у молодых мышей, были сохранены у более старых животных (дополнительная таблица 3). Мы исключили возможность того, что SHC014-MA15 опосредовал инфекцию через альтернативный рецептор на основе экспериментов с использованием Ace2?/? мышей,которые не показали потери веса или окрашивания антигеном после инфекции SHC014-MA15 (дополнительный рис. 4а, Б и дополнительная таблица 2Вместе эти данные указывают на то, что вирусы с шипом SHC014 способны индуцировать потерю веса у мышей в контексте вирулентного ков-вируса.

Учитывая доклиническую эффективность терапии моноклональными антителами к Эболе, такими как ZMApp10, мы затем попытались определить эффективность моноклональных антител к SARS-CoV против инфекции SHC014-MA15. Ранее сообщалось о четырех широко нейтрализующих человеческих моноклональных антителах, нацеленных на спайковый белок SARS-CoV, которые являются вероятными реагентами для иммунотерапии11,12,13 Мы исследовали влияние этих антител на репликацию вируса (выраженное в процентах ингибирования репликации вируса) и обнаружили, что в то время как дикий тип SARS-CoV Urbani был сильно нейтрализован всеми четырьмя антителами при относительно низких концентрациях антител (рис . 2а-d), нейтрализация варьировала для SHC014–MA15. Fm6, антитело, генерируемое фаговым дисплеем и escape-мутантами11,12, достигало только фоновых уровней ингибирования репликации SHC014-MA15 (рис. 2а). Аналогичным образом были получены антитела 230.15 и 227.14, которые были получены из В-клеток памяти инфицированных SARS-CoV пациентов13, также не удалось заблокировать репликацию SHC014-MA15 (рис. 2b,c). Для всех трех антител различия между спайковыми аминокислотными последовательностями SARS и SHC014 соответствовали прямым или смежным изменениям остатков, обнаруженным у escape-мутантов SARS-CoV (fm6 N479R; 230.15 L443V; 227.14 K390Q/E), что, вероятно, объясняет отсутствие нейтрализующей активности антител против SHC014. Наконец, моноклональное антитело 109.8 смогло достичь 50% нейтрализации SHC014-MA15, но только при высоких концентрациях (10 мкг/мл) (Рис. 2dВ совокупности полученные результаты демонстрируют, что широко нейтрализующие антитела против SARS-CoV могут иметь лишь незначительную эффективность против эмерджентных SARS-подобных штаммов CoV, таких как SHC014.

Рисунок 2: моноклональные антитела к SARS-CoV обладают минимальной эффективностью против SARS-подобных коронавирусов.
Рисунок 2

(ad) Анализы нейтрализации оценивают эффективность (измеряемую как уменьшение количества бляшек) панели моноклональных антител, которые все первоначально были сгенерированы против эпидемического SARS-CoV, против заражения клеток Vero SARS-CoV Urbani (черный) или SHC014-MA15 (зеленый). Антитела были fm6 (н = 3 на Урбани; н = 5 для SHC014-МА15)11,12 (а), 230.15 (н = 3 на Урбани; н = 2 для SHC014-МА15) (б), 227.15 (н = 3 на Урбани; н = 5 для SHC014-МА15) (С) а 109.8 (н = 3 на Урбани; н = 2 для SHC014-МА15)13 (ДКаждая точка данных представляет собой среднее значение группы, а полосы ошибок определяют s.e.m. обратите внимание , что полосы ошибок в зараженных SARS-CoV Urbani клетках Vero в b,c перекрываются символами и не видны.

Чтобы оценить эффективность существующих вакцин против инфекции SHC014-MA15, мы вакцинировали пожилых мышей двойной инактивацией цельного SARS-CoV (DIV). Предыдущая работа показала, что DIV может нейтрализовать и защитить молодых мышей от заражения гомологичным вирусом14; однако вакцина не смогла защитить пожилых животных, у которых также наблюдалась усиленная иммунная патология, что указывает на возможность нанесения вреда животным из-за вакцинации15. Здесь мы обнаружили, что DIV не обеспечивает защиту от вызова с SHC014-MA15 в отношении потери веса или вирусного титра (Дополнительный рис. 5а,б). В соответствии с предыдущим сообщением с другими гетерологичными CoVs15 группы 2b, сыворотка от DIV-вакцинированных пожилых мышей также не смогла нейтрализовать SHC014-MA15 (дополнительный рис. 5c). Примечательно, что вакцинация DIV привела к стойкой иммунной патологии (дополнительная таблица 4) и эозинофилии (дополнительная рис. 5d–f). Вместе эти результаты подтверждают, что вакцина DIV не будет защищать от инфекции SHC014 и, возможно, может усилить заболевание в пожилой вакцинированной группе.

В отличие от вакцинации мышей DIV, использование SHC014-MA15 в качестве живой аттенуированной вакцины показало потенциальную перекрестную защиту от заражения SARS-CoV, но результаты имеют важные предостережения. Мы заразили молодых мышей 104 p.f. u. SHC014-MA15 и наблюдали их в течение 28 дней. Затем мы бросили вызов мышам с SARS-MA15 на 29-й день (дополнительный рис. 6аПредшествующее заражение мышей высокой дозой SHC014-MA15 обеспечивало защиту от вызова летальной дозой SARS-MA15, хотя был только минимальный ответ на нейтрализацию SARS-CoV от антисыворотки, вызванной через 28 дней после заражения SHC014-MA15 (дополнительный рис. 6b, 1:200). В отсутствие вторичного усиления антигена 28 d.p.i. представляет собой ожидаемый пик титров антител и подразумевает, что со временем будет снижена защита от SARS-CoV16,17 Аналогичные результаты, свидетельствующие о защите от вызова летальной дозой SARS-CoV, наблюдались у пожилых мышей BALB/c в отношении потери веса и репликации вируса (дополнительный рис. 6С,г). Однако инфекционная доза SHC014-MA15 в дозе 104 p. f. u. индуцировала >10% потерю веса и летальность у некоторых пожилых животных (>Рис. 1 и дополнительный Рис. 3). Мы обнаружили, что вакцинация с более низкой дозой SHC014-MA15 (100 p.f.u.) не вызывала потери веса, но также не смогла защитить пожилых животных от смертельной дозы SARS-MA15 (дополнительный рис. 6e,fВместе взятые данные свидетельствуют о том, что SHC014-MA15 challenge может обеспечить перекрестную защиту от SARS-CoV с помощью консервативных эпитопов, но требуемая доза индуцирует патогенез и исключает использование в качестве аттенуированной вакцины.

Установив, что Спайк SHC014 обладает способностью опосредовать инфекцию клеток человека и вызывать заболевание у мышей, мы далее синтезировали полноразмерный инфекционный клон SHC014-CoV на основе подхода, используемого для SARS-CoV (рис. 3а)2. Репликация в клетках Vero не выявила дефицита SHC014-CoV по сравнению с таковым для SARS-CoV (рис. 3б), однако SHC014-CoV был значительно (Р < 0,01) ослаблен в первичных культурах HAE как через 24, так и через 48 ч после заражения (рис.3С). In vivo заражение мышей не продемонстрировало значительной потери веса, но продемонстрировало снижение вирусной репликации в легких полноразмерной инфекции SHC014-CoV по сравнению с SARS-CoV Urbani (рис. 3d,е). Вместе взятые результаты подтверждают жизнеспособность полноразмерного SHC014-CoV, но предполагают, что требуется дальнейшая адаптация для того, чтобы его репликация была эквивалентна репликации эпидемического SARS-CoV в респираторных клетках человека и мышей.

Рис. 3: полноразмерный SHC014-CoV реплицируется в дыхательных путях человека, но не обладает вирулентностью эпидемического SARS-CoV.
рис. 3

(а) схематическое изображение SHC014-ков молекулярного клона, который был синтезирован в виде шести непрерывных кднк (места SHC014A, SHC014B, SHC014C, SHC014D, SHC014E и SHC014F) в окружении уникальных BglI-сайтов, которые допускаются для направленного собрания полноразмерные кднк выражая открытую рамку считывания (для 1а, 1б, Спайк, 3, габарита, матрицы, 6-8 и нуклеокапсида). Подчеркнутые нуклеотиды представляют собой свисающие последовательности, образующиеся после расщепления фермента рестрикции. (b,c) Вирусная репликация SARS-CoV Urbani (черный) или SHC014-CoV (зеленый) после инфицирования клеток Vero (b) или хорошо дифференцированные, первичные воздушно-жидкостные интерфейсные культуры клеток HAE (c) при MOI 0,01. Образцы отбирали в отдельные моменты времени с биологическими копиями (n = 3) для каждой группы. Данные представляют собой один эксперимент как для клеток Vero, так и для клеток HAE. (d,e) Потеря веса (н = 3 для SARS-коронавирус МА15, н = 7 для SHC014-ков; П = 6 для ОРВИ-Урбани) (д) и вирусной репликации в легких (П = 3 для ОРВИ-Урбани и SHC014-ков) (е) от 10-недельных мышей линии balb/с, инфицированных 1 ? 105 p.f.u. SARS-CoV MA15 (серый), SHC014-CoV (зеленый) или SARS-CoV Urbani (черный) по маршруту i.n. Каждая точка данных представляет собой среднее значение группы, а полосы ошибок определяют s.e.m. **P < 0,01 и ***P < 0,001 с использованием двухвостого T-критерия Стьюдента для отдельных временных точек.

Во время эпидемии торс-ков были быстро установлены связи между пальмовыми циветтами и штаммами ков, которые были обнаружены у людей4. Основываясь на этом выводе, общая парадигма возникновения утверждает, что эпидемический SARS-CoV возник как вирус летучих мышей, перескочил на циветт и включил изменения в рецептор-связывающий домен (RBD) для улучшения связывания с циветтой Ace2 (ref. 18). Последующее воздействие на людей на рынках живых животных позволило человеку заразиться штаммом циветты, который, в свою очередь, приспособился стать эпидемическим штаммом (рис. 4аОднако филогенетический анализ показывает, что ранние штаммы атипичной пневмонии человека, по-видимому, более тесно связаны со штаммами летучих мышей, чем со штаммамициветт18 . Таким образом, вторая парадигма утверждает, что прямая передача летучих мышей человеку инициировала возникновение SARS-CoV и что пальмовые циветты служили вторичным хозяином и резервуаром для продолжения инфекции (рис. 4Б)19 Для обеих парадигм Адаптация Спайка во вторичном хозяине рассматривается как необходимость, причем большинство мутаций, как ожидается, произойдет в пределах RBD, тем самым способствуя улучшению инфекции. Обе теории предполагают, что пулы Ковов летучих мышей ограничены и что мутации в диапазоне хозяина являются как случайными, так и редкими, что снижает вероятность будущих событий появления у людей.

Рисунок 4: парадигмы возникновения коронавирусов.
рис. 4

Штаммы коронавируса сохраняются в квазивид-пулах, циркулирующих в популяциях летучих мышей. (а,б) Традиционные теории возникновения SARS-CoV утверждают, что мутанты диапазона хозяина (красный круг) представляют собой случайные и редкие случаи, которые позволяют заражать альтернативных хозяев. Парадигма вторичного хозяина (а) утверждает, что нечеловеческий хозяин заражен вирусом-предшественником летучей мыши и, благодаря адаптации, облегчает передачу человеку; последующая репликация у людей приводит к эпидемическому вирусному штамму. Прямая парадигма (b) предполагает, что передача происходит между летучими мышами и людьми без необходимости промежуточного хозяина; отбор затем происходит в человеческой популяции с близкородственными вирусами, реплицирующимися во вторичном хозяине, что позволяет продолжать вирусную персистенцию и адаптацию у обоих. (с) Данные по химерным вирусам, подобным SARS, утверждают, что квазивид-пул поддерживает несколько вирусов, способных заражать человеческие клетки без необходимости мутаций (красные круги). Хотя адаптация во вторичных или человеческих хозяевах может потребоваться для возникновения эпидемии, если вирусы, содержащие шипы SHC014, рекомбинируются с вирулентными костями ков (круги с зелеными контурами), то эпидемическое заболевание может быть результатом у людей. Существующие данные поддерживают элементы всех трех парадигм.

Хотя наше исследование не опровергает другие пути возникновения, оно утверждает третью парадигму, в которой циркулирующие пулы ков летучих мышей поддерживают "уравновешенные" спайковые белки, способные заражать людей без мутации или адаптации (рис. 4С). Эта гипотеза иллюстрируется способностью химерного вируса, содержащего Спайк SHC014 в позвоночнике SARS-CoV, вызывать устойчивую инфекцию как в культурах дыхательных путей человека, так и у мышей без адаптации к RBD. В сочетании с наблюдением ранее выявленных патогенных ков позвоночника3,20 наши результаты показывают , что исходные материалы, необходимые для возникновения ТОРСОПОДОБНЫХ эмерджентных штаммов, в настоящее время циркулируют в резервуарах для животных. Примечательно, что хотя полноразмерный SHC014-CoV, вероятно, требует дополнительной адаптации позвоночника для опосредования заболевания человека, документированные высокочастотные события рекомбинации в семействах CoV подчеркивают возможность будущего возникновения и необходимость дальнейшей подготовки.

На сегодняшний день геномные экраны популяций животных в основном используются для выявления новых вирусов в условиях вспышек21. Данный подход расширяет эти наборы данных для изучения вопросов возникновения вирусов и терапевтической эффективности. Мы рассматриваем вирусы с шипом SHC014 как потенциальную угрозу из-за их способности реплицироваться в первичных культурах дыхательных путей человека-наилучшей доступной модели заболевания человека. Кроме того, наблюдаемый патогенез у мышей указывает на способность SHC014-содержащих вирусов вызывать заболевания в моделях млекопитающих без адаптации к RBD. Примечательно, что дифференциальный тропизм в легких по сравнению с таковым при SARS-MA15 и ослабление полноразмерного SHC014-CoV в культурах HAE по отношению к SARS-CoV Urbani предполагают, что факторы, выходящие за рамки связывания ACE2, включая Спайк-процессивность, биодоступность рецепторов или антагонизм иммунных реакций хозяина, могут способствовать возникновению эмерджентности. Однако необходимы дальнейшие испытания на нечеловеческих приматах, чтобы перевести эти находки в патогенный потенциал человека. Важно отметить, что отсутствие доступных терапевтических средств определяет критическую потребность в дальнейших исследованиях и разработке методов лечения. Благодаря этим знаниям могут быть разработаны программы эпиднадзора, диагностические реагенты и эффективные методы лечения, которые защищают от появления специфических ков группы 2b, таких как SHC014, и они могут быть применены к другим ветвям ков, которые поддерживают аналогичные гетерогенные пулы.

Помимо предложения подготовки к борьбе с будущими возникающими вирусами, этот подход должен рассматриваться в контексте санкционированной правительством США паузы в исследованиях усиления функции (GOF)22. Исходя из предыдущих моделей эмерджентности (рис. 4а,б), создание химерных вирусов типа SHC014-MA15 не должно было приводить к повышению патогенности. Хотя SHC014-MA15 ослаблен относительно своего родительского мыш-приспособленного SARS-CoV, подобные исследования изучая патогенность CoV с диким типом Urbani Спайком внутри костяк MA15 не показали никакую потерю веса в мышах и уменьшили вирусную репликацию23. Таким образом, относительно Urbani spike–MA15 CoV, SHC014-MA15 показывает усиление патогенеза (Рис. 1На основании этих выводов группы научных обзоров могут счесть подобные исследования по созданию химерных вирусов на основе циркулирующих штаммов слишком рискованными, поскольку нельзя исключать повышенную патогенность в моделях млекопитающих. В сочетании с ограничениями на мышиные адаптированные штаммы и разработку моноклональных антител с использованием escape-мутантов исследования возникновения ков и терапевтической эффективности могут быть серьезно ограничены в будущем. Вместе эти данные и ограничения представляют собой перекресток исследовательских проблем GOF; потенциал подготовки и смягчения последствий будущих вспышек должен быть сопоставлен с риском возникновения более опасных патогенов. При разработке дальнейшей политики важно учитывать ценность данных, полученных в результате этих исследований, а также необходимость дальнейшего изучения этих типов химерных вирусных исследований в сопоставлении с присущими им рисками.

В целом, наш подход использовал данные метагеномики для выявления потенциальной угрозы, создаваемой циркулирующим летучим мышам SARS-подобным CoV SHC014. Из-за способности химерных вирусов SHC014 реплицироваться в культурах дыхательных путей человека, вызывать патогенез in vivo и избегать современной терапии существует необходимость как в эпиднадзоре, так и в усовершенствованной терапии против циркулирующих вирусов, подобных SARS. Наш подход также открывает возможности использования данных метагеномики для прогнозирования возникновения вирусов и применения этих знаний при подготовке к лечению будущих возникающих вирусных инфекций.

Методы

Вирусы, клетки, инфекции in vitro и анализы бляшек.

Дикого типа SARS-CoV (Urbani), адаптированного к мышам SARS-CoV (MA15) и химерного SARS-подобного CoV культивировали на клетках Vero E6 (полученных из Медицинского исследовательского института инфекционных заболеваний армии США), выращенных в модифицированной среде Eagle's medium (DMEM) Dulbecco (Gibco, CA) и 5% фетальной клоновой сыворотке (FCS) (Hyclone, South Logan, UT) наряду с антибиотиком/антимикотиком (Gibco, Carlsbad, CA). Клетки DBT (Baric laboratory, источник неизвестен), экспрессирующие ОРТОЛОГИ ACE2, ранее были описаны как для человека, так и для циветты; последовательность Ace2 летучей мыши была основана на последовательности Rhinolophus leschenaulti, и клетки DBT, экспрессирующие bat Ace2, были установлены, как описано ранее8. Эксперименты по псевдотипированию были аналогичны экспериментам с использованием псевдовируса на основе ВИЧ, приготовленного , как описано ранее10, и исследованного на клетках HeLa (Уханьский институт вирусологии), которые экспрессировали ОРТОЛОГИ ACE2. Клетки HeLa выращивали в минимальной эссенциальной среде (MEM) (Gibco, CA), дополненной 10% FCS (Gibco, CA), как описано ранее24. Кривые роста в Vero E6, DBT, Calu-3 2B4 и первичных эпителиальных клетках дыхательных путей человека были выполнены, как описано ранее8,25 Ни один из запасов рабочей клеточной линии не был недавно аутентифицирован или протестирован на микоплазму, хотя исходные семенные запасы, используемые для создания рабочих запасов, свободны от загрязнения. Человеческие легкие для культур HAE были закуплены в соответствии с протоколами, одобренными Советом по институциональному обзору Университета Северной Каролины в Чапел–Хилле. Культуры HAE представляют собой высокодифференцированный эпителий дыхательных путей человека, содержащий реснитчатые и не реснитчатые эпителиальные клетки, а также бокаловидные клетки. Культуры также выращивают на границе раздела воздух-жидкость в течение нескольких недель перед использованием, как описано ранее26 Вкратце, клетки промывали PBS и инокулировали вирусом или имитировали-разводили в PBS в течение 40 мин при 37 °C. После инокуляции клетки промывали трижды и добавляли свежую среду для обозначения времени '0'. Три или более биологических копии были собраны в каждый описанный момент времени. Ослепление не использовалось ни в каких выборках образцов, и образцы не были рандомизированы. Все культивирование вируса проводили в лаборатории уровня биобезопасности (BSL) 3 с резервными вентиляторами в шкафах биобезопасности, как описано ранее нашей группой2 Весь персонал носил мощные респираторы для очистки воздуха (Breathe Easy, 3M) с костюмами Tyvek, фартуками и пинетками и был одет в двойные перчатки.

Кластеризация последовательностей и структурное моделирование.

Полноразмерные геномные последовательности и аминокислотные последовательности доменов S1 Спайка репрезентативных CoV были загружены из Genbank или Pathosystems Resource Integration Center (PATRIC), выровнены с ClustalX и филогенетически сопоставлены с помощью оценки максимального правдоподобия с использованием 100 бутстрапов или с помощью PhyML (https://code.google.com/p/phyml/) пакет, соответственно. Дерево было сгенерировано с использованием максимального правдоподобия с помощью пакета PhyML. Шкала представляет собой нуклеотидные замены. Маркируются только узлы с поддержкой bootstrap выше 70%. Дерево показывает, что ков делятся на три различные филогенетические группы, определяемые как ?-ков, ?-ков и ?-ков. Классические кластеры подгрупп обозначены как 2a, 2b, 2c и 2d для ?-ков, а также 1a и 1b для ?-ков. Структурные модели были сгенерированы с помощью Modeller (Max Planck Institute Bioinformatics Toolkit) для создания гомологических моделей для SHC014 и Rs3367 RBD SARS в комплексе с ACE2 на основе кристаллической структуры 2AJF (Банк данных белков). Модели гомологии были визуализированы и обработаны в MacPyMol (версия 1.3).

Конструирование химерных вирусов, подобных SARS.

Как дикие, так и химерные вирусы были получены либо из SARS-CoV Urbani, либо из соответствующего адаптированного к мыши (SARS-CoV MA15) инфекционного клона (ic), как описано ранее27 Плазмиды, содержащие спайковые последовательности для SHC014, были экстрагированы рестрикционным дайджестом и лигированы в плазмиды E и F инфекционного клона MA15. Клон был разработан и приобретен у Bio Basic в виде шести смежных кднк с использованием опубликованных последовательностей, фланкированных уникальными сайтами эндонуклеазы рестрикции II класса (BglI). После этого плазмиды, содержащие фрагменты генома дикого типа, химерные SARS-CoV и SHC014-CoV, амплифицировали, иссекали, лигировали и очищали. In vitro затем были проведены реакции транскрипции для синтеза полноразмерной геномной РНК, которая была трансфицирована в клетки Vero E6, как описано ранее2. Среда из трансфецированных клеток собиралась и служила семенным материалом для последующих экспериментов. Химерные и полноразмерные вирусы были подтверждены последовательным анализом перед использованием в этих исследованиях. Синтетическая конструкция химерного мутанта и полноразмерного SHC014-CoV была одобрена Комитетом по институциональной биобезопасности Университета Северной Каролины и Комитетом по исследованиям двойного назначения концерна.

Этическое заявление.

Это исследование было проведено в соответствии с рекомендациями по уходу и использованию животных Управления по охране лабораторных животных (OLAW), NIH. Институциональный Комитет по уходу и использованию животных (IACUC) Университета Северной Каролины в Чапел-Хилле (UNC, разрешение № A-3410-01) одобрил протокол исследования животных (IACUC № 13-033), используемый в этих исследованиях.

Мыши и инфекция in vivo.

Самки, 10-недельные и 12-месячные мыши BALB/cAnNHsD были заказаны из лабораторий Harlan Laboratories. Инфекции мыши были сделаны как ранее описано20. Вкратце, животные были доставлены в лабораторию BSL3 и позволили акклиматизироваться в течение 1 недели до заражения. Для заражения и вакцинации живыми аттенуированными вирусами мышей обезболивали смесью кетамина и ксилазина и заражали интраназально, при вызове, 50 мкл фосфатно-буферного физиологического раствора (ФБС) или разбавляли вирус тремя или четырьмя мышами в каждый момент времени, на каждую инфекционную группу в дозе, как описано на рисунке. Для отдельных мышей обозначения инфекции, включая неспособность вдохнуть всю дозу, пузырение инокулята из носа или инфекцию через рот, возможно, привели к исключению данных мыши по усмотрению исследователя; после заражения никакие другие заранее установленные критерии исключения или включения не определены. Ни в одном эксперименте на животных не применялось ослепление, и животные не были рандомизированы. Для вакцинации молодых и старых мышей вакцинировали путем инъекции подушечки ноги объемом 20 мкл либо 0,2 мкг двойной инактивированной вакцины SARS-CoV с квасцами, либо макетом PBS; затем мышей стимулировали тем же режимом через 22 дня, а затем бросали вызов через 21 день. Во всех группах, согласно протоколу, животных ежедневно наблюдали на предмет клинических признаков заболевания (сгорбленность, взъерошенная шерсть и снижение активности) в течение всего периода эксперимента. Потеря веса контролировалась ежедневно в течение первых 7 дней, после чего контроль веса продолжался до тех пор, пока животные не восстановились до своего первоначального исходного веса или не показали непрерывный прирост веса в течение 3 дней. Всех мышей, потерявших более 20% от своей исходной массы тела, кормили наземным кормом и дополнительно контролировали несколько раз в день, пока они находились под 20% - ным ограничением. Мышей, потерявших более 30% от своей исходной массы тела, немедленно приносили в жертву в соответствии с протоколом. Любая мышь, считавшаяся умирающей или вряд ли выздоровевшей, также была гуманно принесена в жертву по усмотрению исследователя. Эвтаназия была проведена с использованием передозировки изофлурана, и смерть была подтверждена вывихом шейки матки. Все исследования на мышах проводились в Университете Северной Каролины (Animal Welfare Assurance #A3410-01) с использованием протоколов, одобренных комитетом UNC Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC).

Гистологический анализ.

Левое легкое удаляли и погружали в 10% - ный буферный формалин (Фишер) без раздувания в течение 1 недели. Ткани были погружены в парафин, а срезы размером 5 мкм были подготовлены в центре ГИСТОПАТОЛОГИИ комплексного онкологического центра UNC Lineberger. Для определения степени окрашивания антигеном срезы окрашивали на вирусный антиген с использованием коммерчески доступного поликлонального анти-нуклеокапсидного антитела SARS-CoV (Imgenex) и забивали слепым способом путем окрашивания дыхательных путей и паренхимы, как описано ранее. Изображения были получены с помощью микроскопа Olympus BX41 с камерой Olympus DP71.

Анализы на нейтрализацию вирусов.

Анализы титра нейтрализации уменьшения бляшек проводили с использованием ранее охарактеризованных антител против SARS-CoV, как описано ранее11,12,13. Вкратце, нейтрализующие антитела или сыворотку последовательно разбавляли в два раза и инкубировали со 100 ед. различных инфекционных клоновых штаммов SARS-CoV в течение 1 ч при 37 °C. Затем вирус и антитела добавляли к 6-луночной пластине с 5 ? 105 клетками Vero E6/лунка с множественными репликами (n ? 2). После 1-часовой инкубации при 37 °С клетки накладывали на 3 мл 0,8% - ной агарозы в среде. Пластинки инкубировали в течение 2 дней при 37 °С, окрашивали нейтральным красным цветом в течение 3 ч и подсчитывали бляшки. Процент уменьшения бляшек рассчитывали как (1 ? (количество бляшек с антителом/количество бляшек без антитела)) ? 100.

Статистический анализ.

Все эксперименты проводились в двух экспериментальных группах (либо два вируса, либо вакцинированные и невакцинированные когорты). Таким образом, достоверные различия в титре вируса и оценке гистологии определялись с помощью двухвалентного T-критерия Стьюдентав отдельные моменты времени. Данные были нормально распределены в каждой сравниваемой группе и имели одинаковую дисперсию.

Биобезопасность и биозащита.

Отчетные исследования были начаты после того, как институциональный Комитет по биобезопасности Университета Северной Каролины одобрил экспериментальный протокол (название проекта: генерация инфекционных клонов летучих мышей SARS-подобных CoVs; Lab Safety Plan ID: 20145741; Schedule G ID: 12279). Эти исследования были начаты до того, как правительство США приостановило финансирование исследований в рамках совещательного процесса по отдельным функциональным исследованиям, связанным с вирусами гриппа, БВРС и торс (http://www.phe.gov/s3/dualuse/Documents/gain-of-function.pdfЭтот документ был рассмотрен финансовым агентством NIH. Было предложено продолжить эти исследования, и это было одобрено Национальным институтом здравоохранения.

SARS-CoV-это избранный агент. Все работы по этим исследованиям проводились в соответствии с утвержденными стандартными рабочими процедурами (Соп) и условиями безопасности для торс-ков, БВРС-КоВ и других связанных с ними ков. Наши институциональные объекты CoV BSL3 были разработаны в соответствии с требованиями безопасности, которые рекомендуются в области биобезопасности в микробиологических и биомедицинских лабораториях (BMBL), Министерстве здравоохранения и социальных служб США, службе общественного здравоохранения, центрах по контролю заболеваний (CDC) и NIH. Планы лабораторной безопасности были представлены, и объект был одобрен для использования департаментом охраны окружающей среды и безопасности UNC (EHS) и CDC. Для входа в объект требуется электронная карта доступа. Все работники были обучены EHS безопасному использованию мощных респираторов для очистки воздуха (Papr), а также соответствующим рабочим привычкам в учреждении BSL3 и активным планам медицинского наблюдения. Наши объекты CoV BSL3 содержат резервные вентиляторы, аварийное питание вентиляторов и шкафы биологической безопасности и морозильные камеры, а также наши объекты могут вместить стеллажи для мышей SealSafe. Материалы, классифицированные как агенты BSL3, состоят из штаммов-предшественников SARS-CoV, bat-CoV, MERS-CoV и мутантов, полученных из этих патогенов. В рамках установки BSL3 эксперименты с инфекционным вирусом проводятся в сертифицированном кабинете биобезопасности класса II (BSC). Все сотрудники носят скрабы, костюмы и фартуки Tyvek, Папры и бахилы, а их руки-в двойных перчатках. Пользователи BSL3 подпадают под действие плана медицинского наблюдения, контролируемого Университетской клиникой охраны труда сотрудников (UEOHC), который включает в себя ежегодное физическое обследование, ежегодную вакцинацию против гриппа и обязательное сообщение о любых симптомах, связанных с ков-инфекцией в периоды работы в BSL3. Все пользователи BSL3 обучены управлению экспозицией и протоколам отчетности, подготовлены к самокарантину и прошли обучение безопасной доставке в местный отдел Управления инфекционными заболеваниями в чрезвычайной ситуации. Все потенциальные события воздействия сообщаются и исследуются EHS и UEOHC, причем отчеты направляются как в CDC, так и в NIH.

Коды присоединения

Присоединение

Банк Данных По Протеину

История изменений

  • 30 марта 2020 года

    Примечание редакции, март 2020 года: мы знаем, что эта статья используется в качестве основы для непроверенных теорий о том, что новый коронавирус, вызывающий COVID-19, был спроектирован. Нет никаких доказательств того, что это правда; ученые считают, что животное является наиболее вероятным источником коронавируса.

  • 20 ноября 2015 года

    В версии этой статьи, первоначально опубликованной в интернете, авторы не признали источник финансирования, USAID-EPT-PREDICT funding from EcoHealth Alliance, до Z.-L. S. ошибка была исправлена для печатных, PDF и HTML версий этой статьи.

Рекомендации

  1. 1

    Ge, X. Y. et al. Выделение и характеристика атипичного коронавируса летучей мыши, использующего рецептор ACE2. Nature 503, 535-538 (2013).

      Статья CAS  Google Scholar 

  2. 2

    Yount, B. et al. Обратная генетика с полноразмерной инфекционной кднк коронавируса тяжелого острого респираторного синдрома. Прок. Натл. Acad. Sci. USA 100, 12995-13000 (2003).

      Статья CAS  Google Scholar 

  3. 3

    Беккер, М. М. и др. Синтетический рекомбинантный коронавирус летучей мыши, подобный SARS, заразен в культивируемых клетках и у мышей. Proc. Натл. Acad. Sci. USA 105, 19944-19949 (2008).

    CAS  статья  Google Scholar 

  4. 4

    Peiris, J. S., Guan, Y. & Yuen, K. Y. тяжелый острый респираторный синдром. Nat. Med. 10, S88–S97 (2004).

      Статья CAS  Google Scholar 

  5. 5

    Аль-Тауфик, Дж.А. и др. Эпиднадзор за возникающими респираторными вирусами. Ланцет-Инфекция. Дис. 14, 992-1000 (2014).

    Артикул  Google Scholar 

  6. 6

    Он, Б. и др. Идентификация различных альфакоронавирусов и геномная характеристика нового тяжелого острого респираторного синдрома–подобного коронавируса от летучих мышей в Китае. J. Virol. 88, 7070-7082 (2014).

    Артикул  Google Scholar 

  7. 7

    Ли Ф. распознавание рецепторов и межвидовые инфекции коронавируса атипичной пневмонии. Antiviral Res . 100, 246-254 (2013).

      Статья CAS  Google Scholar 

  8. 8

    Sheahan, T. et al. Механизмы распространения зоонозного тяжелого острого респираторного синдрома коронавируса хозяина в эпителии дыхательных путей человека. J. Virol. 82, 2274-2285 (2008).

      Статья CAS  Google Scholar 

  9. 9

    Есикава, Т. и др. Динамические врожденные иммунные реакции клеток бронхиального эпителия человека на тяжелую коронавирусную инфекцию, ассоциированную с острым респираторным синдромом. PLoS ONE 5, e8729 (2010).

    Артикул  Google Scholar 

  10. 10

    Qiu, X. et al. Реверсия прогрессирующей болезни , вызванной вирусом Эбола, у нечеловеческих приматов с помощью ZMapp. Nature 514, 47-53 (2014).

      Статья CAS  Google Scholar 

  11. 11

    Sui, J. et al. Расширение нейтрализующей активности для прямого блокирования доминирующего антитело-управляемого пути эволюции атипичной пневмонии-коронавируса. PLoS Pathog. 4, e1000197 (2008).

    Статья  Google Scholar 

  12. 12

    Sui, J. et al. Влияние антител к человеческому анти–спайковому белковому рецептору, связывающему домен, на нейтрализацию коронавируса тяжелого острого респираторного синдрома и физическую форму. J. Virol. 88, 13769-13780 (2014).

    Article  Google Scholar 

  13. 13

    Rockx, B. et al. Escape from human monoclonal antibody neutralization affects in vitro and in vivo fitness of severe acute respiratory syndrome coronavirus. J. Infect. Dis. 201, 946–955 (2010).

    CAS  Article  Google Scholar 

  14. 14

    Spruth, M. et al. A double-inactivated whole-virus candidate SARS coronavirus vaccine stimulates neutralizing and protective antibody responses. Vaccine 24, 652–661 (2006).

    CAS  Article  Google Scholar 

  15. 15

    Bolles, M. et al. A double-inactivated severe acute respiratory syndrome coronavirus vaccine provides incomplete protection in mice and induces increased eosinophilic proinflammatory pulmonary response upon challenge. J. Virol. 85, 12201–12215 (2011).

    CAS  Article  Google Scholar 

  16. 16

    Siegrist, C.-A. in Vaccines 6th edn. (eds. Plotkin, S.A., Orenstein, W.A. & Offit, P.A.) 14–32 (W.B. Saunders, 2013).

  17. 17

    Deming, D. et al. Vaccine efficacy in senescent mice challenged with recombinant SARS-CoV bearing epidemic and zoonotic spike variants. PLoS Med. 3, e525 (2006).

    Article  Google Scholar 

  18. 18

    Graham, R.L., Donaldson, E.F. & Baric, R.S. A decade after SARS: strategies for controlling emerging coronaviruses. Nat. Rev. Microbiol. 11, 836–848 (2013).

    CAS  Article  Google Scholar 

  19. 19

    Graham, R.L. & Baric, R.S. Recombination, reservoirs and the modular spike: mechanisms of coronavirus cross-species transmission. J. Virol. 84, 3134–3146 (2010).

    CAS  Article  Google Scholar 

  20. 20

    Agnihothram, S. et al. A mouse model for betacoronavirus subgroup 2c using a bat coronavirus strain HKU5 variant. MBio 5, e00047-14 (2014).

    Article  Google Scholar 

  21. 21

    Relman, D.A. Metagenomics, infectious disease diagnostics and outbreak investigations: sequence first, ask questions later? J. Am. Med. Assoc. 309, 1531–1532 (2013).

    CAS  Article  Google Scholar 

  22. 22

    Kaiser, J. Moratorium on risky virology studies leaves work at 14 institutions in limbo. ScienceInsider http://news.sciencemag.org/biology/2014/11/moratorium-risky-virology-studies-leaves-work-14-institutions-limbo (2014).

  23. 23

    Frieman, M. et al. Molecular determinants of severe acute respiratory syndrome coronavirus pathogenesis and virulence in young and aged mouse models of human disease. J. Virol. 86, 884–897 (2012).

    CAS  Article  Google Scholar 

  24. 24

    Ren, W. et al. Difference in receptor usage between severe acute respiratory syndrome (SARS) coronavirus and SARS-like coronavirus of bat origin. J. Virol. 82, 1899–1907 (2008).

    CAS  Article  Google Scholar 

  25. 25

    Sims, A.C. et al. Release of severe acute respiratory syndrome coronavirus nuclear import block enhances host transcription in human lung cells. J. Virol. 87, 3885–3902 (2013).

    CAS  Article  Google Scholar 

  26. 26

    Fulcher, M.L., Gabriel, S., Burns, K.A., Yankaskas, J.R. & Randell, S.H. Well-differentiated human airway epithelial cell cultures. Methods Mol. Med. 107, 183–206 (2005).

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  27. 27

    Roberts, A. et al. A mouse-adapted SARS-coronavirus causes disease and mortality in BALB/c mice. PLoS Pathog. 3, e5.

    Article  Google Scholar 

Download references

Acknowledgements

Research in this manuscript was supported by grants from the National Institute of Allergy & Infectious Disease and the National Institute of Aging of the US National Institutes of Health (NIH) under awards U19AI109761 (R.S.B.), U19AI107810 (R.S.B.), AI085524 (W.A.M.), F32AI102561 (V.D.M.) and K99AG049092 (V.D.M.), and by the National Natural Science Foundation of China awards 81290341 (Z.-L.S.) and 31470260 (X.-Y.G.), and by USAID-EPT-PREDICT funding from EcoHealth Alliance (Z.-L.S.). Human airway epithelial cultures were supported by the National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Disease of the NIH under award NIH DK065988 (S.H.R.). We also thank M.T. Ferris (Dept. of Genetics, University of North Carolina) for the reviewing of statistical approaches and C.T. Tseng (Dept. of Microbiology and Immunology, University of Texas Medical Branch) for providing Calu-3 cells. Experiments with the full-length and chimeric SHC014 recombinant viruses were initiated and performed before the GOF research funding pause and have since been reviewed and approved for continued study by the NIH. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the NIH.

Author information

Affiliations

Авторы

Contributions

V.D.M. designed, coordinated and performed experiments, completed analysis and wrote the manuscript. B.L.Y. designed the infectious clone and recovered chimeric viruses; S.A. completed neutralization assays; L.E.G. helped perform mouse experiments; T.S. and J.A.P. completed mouse experiments and plaque assays; X.-Y.G. performed pseudotyping experiments; K.D. generated structural figures and predictions; E.F.D. generated phylogenetic analysis; R.L.G. completed RNA analysis; S.H.R. provided primary HAE cultures; A.L. and W.A.M. provided critical monoclonal antibody reagents; and Z.-L.S. provided SHC014 spike sequences and plasmids. R.S.B. designed experiments and wrote manuscript.

Corresponding authors

Correspondence to Vineet D Menachery or Ralph S Baric.

Ethics declarations

Competing interests

The authors declare no competing financial interests.

Supplementary information

Supplementary Text and Figures

Supplementary Figures 1–6 and Supplementary Tables 1–4 (PDF 4747 kb)

Rights and permissions

Reprints and Permissions

About this article

Verify currency and authenticity via CrossMark

Cite this article

Menachery, V., Yount, B., Debbink, K. et al. A SARS-like cluster of circulating bat coronaviruses shows potential for human emergence. Nat Med 21, 1508–1513 (2015). https://doi.org/10.1038/nm.3985

Download citation

Share this article

Anyone you share the following link with will be able to read this content:

Provided by the Springer Nature SharedIt content-sharing initiative

Further reading

Инструктаж По Природе

Подпишитесь на информационный бюллетень Nature Briefing-what matters in science, бесплатно для вашего почтового ящика ежедневно.

Получите самые важные научные истории дня, бесплатно в вашем почтовом ящике. зарегистрируйтесь на Nature Briefing